БИОТЕХНОЛОГИИ ПРОДУКТОВ ПИТАНИЯ И БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ
Обзорная статья
УДК 661.12
DOI: doi.org/10.48612/dalrybvtuz/2025-72-01
EDN: CCFLVV
Методы получения фукоидана и его использование в пищевых продуктах
Татьяна Николаевна Пивненко
Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет, Владивосток, Россия,
доктор биологических наук, профессор, профессор кафедры «Пищевая биотехнология»
ORCID: 0000-0002-0330-489X
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Юлия Михайловна Позднякова
Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет, Владивосток, Россия,
кандидат технических наук
ORCID: 0000-0002-9078-0850
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Роман Владимирович Есипенко
Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет, Владивосток, Россия,
кандидат технических наук, директор НИИ инновационных биотехнологий
ORCID: 0000-0002-8263-6939
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Аннотация. В представленном обзоре на основе анализа современных научных данных показаны актуальность и перспективы использования продуктов переработки фукусовых водорослей (сульфатированных полисахаридов) в пищевой промышленности. Проведено сравнение различных способов выделения фукоидана, показана связь между его структурой и биологической активностью. Показаны функционально-биологические и функционально-технологические свойства фукоидана. Приведены примеры функциональных пищевых продуктов, обогащенных фукоиданом.
Ключевые слова: фукус, фукоидан, экстракция, ультразвук, антиоксидантная активность, реология
Список источников
1. Dai F-J., Chau C-F. Classification and regulatory perspectives of dietary fiber // Journal of Food Drug Analysis. 2016. Vol. 25(1). Р. 37–42. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfda.2016.09.006.
2. Li Y.-O., Komarek A.R. Dietary fiber basics: Health, nutrition, analysis and applications // Food Quality Safety. 2017. Vol. 1(1). Р. 47–59. https://doi.org/10.1093/fqsafe/fyx007.
3. Pyryeva E. A., Safronova A. I. The role of dietary fibers in the nutrition of the population // Problems of Nutrition. 2019. Vol. 88(6). Р. 5–11. https://doi.org/10.24411/0042-8833-2019-10059.
4. Zhang B., Wang S., Wichienchot S., Huang Q., Dhital S. Dietary fibers: structural aspects and nutritional implications. Chapter in a book: Food Hydrocolloids. Springer Nature Singapore Pte Ltd, 2021. https://doi.org/10.1007/978-981-16-0320-4_15.
5. Пивненко Т. Н. Функциональные свойства пищевых волокон и их применение в технологии рыбной продукции // Пищевые системы. 2023. Т. 6(2). С. 233–244. https://doi.org/ 10.21323/2618-9771-2023-6-2-233-244.
6. Jannat-Alipour H., Rezaei M.,Shabanpour B., Tabarsa M., Rafipour F. Addition of seaweed powder and sulphated polysaccharide on shelf_life extension of functional fish surimi restructured product // Journal of Food Science Technology. 2019. Vol. 56(8). Р. 3777–3789. https://doi.org/ 10.1007/s13197-019-03846-y.
7. Eskicioglu V., Kamiloglu S., Nilufer-Erdil D. Antioxidant dietary fibres: Potential functional food ingredients from plant processing by-products // Czech J. Food Sci. 2015. Vol. 33. Р. 487–499.
8. Потороко И. Ю. Паймулина А. В., Ускова Д. Г. и др. Антиоксидантные свойства функциональных пищевых ингредиентов, используемых при производстве хлебобулочных и молочных продуктов, их влияние на качество и сохраняемость продукции // Вестник ВГУИТ. 2017. Т. 79(4). С. 143–151. DOI: 10.20914/2310-1202-2017-4-143-151.
9. Вафина Л. Х., Подкорытова А.. Новые продукты функционального питания на основе биоактивных компонентов морских водорослей // Известия ТИНРО. 2009. Т. 156. С. 348–356.
10. Careche M., Borderías A.J., Sánchez-Alonso I., Lund E.K. Functional seafood products. Chapter in a book: Functional foods: concept to product. Woodhead Publishing Limited, Cambridge, UK, 2011. https://doi.org/10.1533/9780857092557.3.557.
11. López-Marcos M.C., Bailina C., Viuda-Martos M., Pérez-Alvarez J.A., Fernández-López J. Properties of dietary fibers from agroindustrial co-products as source for fiber-enriched foods. // Food and Bioprocess Technology. 2015. Vol.8. Р. 2400–2408. https://doi.org/10.1016/j.focha. 2022.100149.
12. Фукоиданы – сульфатированные полисахариды бурых водорослей. Структура, ферментативная трансформация и биологические свойства / Анастюк С.Д., Беседнова Н.Н., Богданович Л.Н. [и др.]. Владивосток : Дальнаука, 2014. 377 с.
13. Mensah E. O., Kanwugu O. N., Panda P. K., Adadi P. Marine fucoidans: Structural, extraction, biological activities and their applications in the food industry // Food Hydrocolloids. 2023. Vol. 142, Article 108784. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2023.108784.
14. Thanh-Sang Voa, Se-Kwon Kim Fucoidans as a natural bioactive ingredient for functional foods // Journal of functional foods. 2013. Vol. 5. Р. 16–27.
15. Imbs T. I., Ermakova S. P. Can fucoidans of brown algae be considered as antioxidants? // Journal of Marine Biology. 2021. Vol. 47(3). Р. 157–161. https://doi.org/10.1134/ S1063074021030056.
16. Li B., Lu F., Wei X., Zhao R. Fucoidan: Structure and bioactivity // Molecules. 2008. Vol. 13. Р. 1671–1695.
17. Yu J, Li Q, Wu J, Yang X, Yang S, Zhu W, Liu Y, Tang W, Nie S, Hassouna A, White WL, Zhao Y Lu J Fucoidan extracted from sporophyll of Undaria pinnatifida grown in weihai, china – chemical composition and comparison of antioxidant activity of different molecular weight fractions. // Front. Nutr. 2021. Vol. 8. 636930. doi: 10.3389/fnut.2021.636930.
18. Аминина Н. М., Вишневская Т. И., Гурулева О.Н., Ковековдова Л. Т. Состав и возможности использования бурых водорослей дальневосточных морей // Вестник Дальневосточного отделения Российской академии наук. 2007. № 6(136). C. 123–130.
19. Кусайкин М. И., Бурцева Ю. В., Светашева Т. Г. и др. Распространение О-гликозил-гидролаз в морских беспозвоночных. Ферменты морского моллюска Littorina kurila, катализирующие трансформацию фукоиданов // Биохимия. 2003. Т. 68(3). С. 384–392.
20. Bisgrove S. R., Kropf D. L. Cell wall deposition during morphogenesis in fucoid algae // Planta. 2001. Vol. 212. Р. 648–658.
21. Berteau O., Mulloy B. Sulfated fucans, fresh perspectives: Structures, functions, biological properties of sulfated fucans and overview of enzymes active towards this class of polysaccharide // Glycobiology. 2003. Vol.13. Р. 29R–40R.
22. Mourao P. A. S. Use of sulfated fucans as anticoagulant and antithrombotic agents: Future perspectives // Current Pharmaceutical Design. 2004. Vol. 10. Р. 967–981.
23. Anisha G. S., Padmakumari S., Patel A. K., Pandey A., Singhania R. R. Fucoidan from marine macroalgae: Biological actions and applications in regenerative medicine, drug delivery systems and food industry // Bioengineering. 2022. Vol. 9(9). Р. 472. https://doi.org/10.3390/ bioengineering9090472.
24. Макаренкова И. Д., Компанец Г. Г., Беседнова Н. Н., Слонова Р. А., Звягинцева Т. Н., Шевченко Н. М. Ингибирующее действие фукоиданов на адсорбцию вируса Hantaan на модели перитонеальных макрофагов in vitro // Вопр. вирусологии 2008. Т. 53. С. 12–15.
25. Ayrapetyan O. N., Obluchinskaya E. D., Zhurishkina E. V., Skorik Y. A., Lebedev D. V., Kulminskaya A. A., Lapina I. M. Antibacterial properties of fucoidans from the brown algae Fucus vesiculosus of the Barents Sea // Biology. 2021. Vol. 10. Р. 67. https://doi.org/10.3390/ biology 10010067.
26. Abdul-Rehman Phull, Akhtar Ali , Madiha Ahmed, Muhammad Zia, Ihsanul Haq, Song Ja Kim. In vitro antileishmanial, antibacterial, antifungal and anticancer activity of fucoidan from Undaria pinnatifida // International Journal of Biosciences. 2017. Vol. 11(4). P. 219–227. http://www.innspub.net.
27. Ashayerizadeh O., Dastar B., Pourashouri P. Study of antioxidant and antibacterial activities of depolymerized fucoidans extracted from Sargassum tenerrimum // International Journal of Biological Macromolecules. 2020. Vol. 151. P. 1259–1266. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac. 2019.10.172.
28. Vo T. S., Ngo D. H., Kim S. K. Potential targets for antiinflammatory and anti-allergic activities of marine algae: An overview // Inflammation and Allergy – Drug Targets. 2012. Vol. 11. P. 90–101.
29. Kang S. M., Kim K. N., Lee S. H., Ahn G., Cha S. H., Kim A. D., Yang X. D., Kang M. C., Jeon Y. J. Antiinflammatory activity of polysaccharide purified from AMG-assistant extract of Ecklonia cava in LPS-stimulated RAW264.7 macrophages // Carbohydrate Polymers. 2011. Vol. 85. P. 80–85.
30. Cui Y. Q., Zhang L. J., Zhang T., Luo D. Z., Jia Y. J., Guo Z. X., Zhang Q. B., Wang X., Wang X. M. Inhibitory effect of fucoidan on nitric oxide production in lipopolysaccharide activated primary microglia // Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 2010. Vol. 37. P. 422–428.
31. Besednova N. N., Kuznetsova T. A., Zaporozhets T. S., Zvyagintseva T. N. Sea brown algae is a source of new antibacterial pharmaceutical substances // Antibiot. Chemother. 2015. Vol. 60. P. 3–4.
32. Diaz-Rubio M. E., Perez-Jimenez J., Saura-Calixto F. Dietary fiber and antioxidant capacity in Fucus vesiculosus products // International Journal of Food Sciences and Nutrition. 2009. Vol. 60. P. 23–34.
33. Micheline R. S., Cybelle M., Celina G. D., Fernando F. S., Hugo O .R., Edda L. Antioxidant activities of sulfated polysaccharides from brown and red seaweeds // Journal of Applied Phycology. 2007. Vol. 19. P. 153–160.
34. Wang J., Zhang Q., Zhang Z., Li Z. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica // International Journal of Biological Macromolecules. 2008. Vol. 42, P. 127–132.
35. Kim M. J., Chang U.J., Lee J.S. Inhibitory effects of fucoidan in 3T3-L1 adipocyte differentiation. // Marine Biotechnology. 2009. Vol. 5. P. 557–562.
36. Park M. K., Jung U., Roh C. Fucoidan from marine brown algae inhibits lipid accumulation // Marine Drugs. 2011. Vol. 9. P. 1359–1367.
37. Ponce N. M. A., Pujol C. A., Damonte E. B., Flores M. L., Stortz C. A. Fucoidans from the brown seaweed Adenocystis utricularis: Extraction methods, antiviral activity and structural studies // Carbohydr. Res. 2003. Vol. 338. P.153–165.
38. Paz O., Carpena M., Garcia-Oliveira P., Echave J., Soria-Lopez A., Garcia-Perez P., Simal-Gandara J. Seaweed polysaccharides: Emerging extraction technologies, chemical modifications and bioactive properties // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2021. Vol. 63(4). https://doi.org/10.1080/10408398.2021. 1969534.
39. Garcia-Vaquero M., Rajauria G., Tiwari B. Conventional extraction techniques: Solvent extraction. In S. K. M. D. Torres (Ed.), Sustainable seaweed technologies. 2020. 171–89. Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-817943- 7.00006-8.
40. Nguyen T., Mikkelsen M., Tran V., Trang V., Rhein-Knudsen N., Holck J., Meyer A. Enzyme-assisted fucoidan extraction from brown macroalgae Fucus distichus subsp. evanescens and Saccharina latissima // Marine Drugs. 2020. Vol. 18(6). P. 296. https://doi.org/10.3390/ md18060296.
41. Rhein-Knudsen N., Reyes-Weiss D., Horn S.J. Extraction of high purity fucoidans from brown seaweeds using cellulases and alginate lyases // International Journal of Biological Macromolecules. 2023. Vol. 229. P. 199–209. https://doi.org/10.1016/j. ijbiomac.2022.12.261.
42. Shanthi N., Arumugam P., Murugan M., Sudhakar M. P., Arunkumar K. Extraction of fucoidan from Turbinaria decurrens and the synthesis of fucoidan-coated AgNPs for anticoagulant application // ACS Omega. 2021. Vol. 6. P. 30998–31008.
43. Sasaki C., Tamura S., Suzuki M., Etomi K., Nii N., Hayashi J., et al. Continuous microwave-assisted step-by-step extraction of bioactive water-soluble materials and fucoidan from brown seaweed Undaria pinnatifida waste // Biomass Conversion and Biorefinery. 2022. Vol. 14. P.7673–7682. https://doi.org/10.1007/s13399-022-03035-6.
44. Yuan Y., Macquerie D. Microwave assisted extraction of sulfated polysaccharides (fucoidan) from Ascophyllum nodosum and its antioxidant activity // Carbohydrate Polymers. 2015. Vol. 129. P. 101–107. https://doi.org/10.1016/j. carbpol.2015.04.057.
45. Dobrinˇci´c, A., Pedisi´c, S., Zori´c, Z., Jurin, M., Roje, M., Coˇz-Rakovac, R., et al. Microwave assisted extraction and pressurized liquid extraction of sulfated polysaccharides from Fucus virsoides and Cystoseira barbata // Foods. 2021. Vol. 10. 1481. https://doi.org/10.3390/ foods10071481.
46. Hmelkov A., Zvyagintseva T., Shevchenko N., Rasin A. B., Ermakova S. Ultrasound-assisted extraction of polysaccharides from brown alga Fucus evanescens. Structure and biological activity of the new fucoidan fractions // Journal of Applied Phycology. 2018. Vol. 30(3), P. 2039–2046. https://doi.org/10.1007/s10811-017-1342-9.
47. Thao My P. L., Sung V. V., Dat T. D., Nam H. M., Mai Thanh Phong M. T., Hieu N. H. Ultrasound-assisted extraction of fucoidan from Vietnamese brown seaweed Sargassum mcclurei and testing bioactivities of the extract // Chemistry Select. 2020. Vol. 5. P. 4371–4380. https://doi.org/10.1002/slct.201903818.
48. Fl´orez-Fern´andez N., Balboa E., Domínguez M. Extraction and purification of fucoidan from marine sources. In S.-K. Kim (Ed.), Encyclopedia of marine biotechnology (pp. 1095–1125). West Sussex, UK: John Wiley & Sons Ltd. (2020). https://doi. org/10.1002/9781119143802.ch44.
49. Alboofetileh M., Rezaei M., Tabarsa M., You S.G. Ultrasound-assisted extraction of sulfated polysaccharide from Nizamuddinia zanardinii: Process optimization, structural characterization, and biological properties // Journal of Food Process Engineering. 2018. Vol. 42, Article e12979. https://doi.org/10.1111/jfpe.12979.
50. Пивненко Т. Н., Позднякова Ю. М., Есипенко Р. В. Влияние сонификации на фракционный состав, физико-химические свойства и антиоксидантную активность функциональных гелей из фукусовых водорослей // Научные труды Дальрыбвтуза. 2024. Т. 68(2). С. 6–18. DOI: doi.org/10.48612/dalrybvtuz/2024-68-01.
51. Паймулина А. В. , Ускова Д. Г., Потороко И. Ю. Влияние ультразвуковой кавитации на процесс микронизации фукоидана, используемого в технологии йогуртов и хлеба // Вестник Южно-Уральского государственного университета. Серия: Пищевые и биотехнологии. 2019. Т. 7(1). С. 58–70.
52. Otero P., Carpena M., Garcia-Oliveira P., Echave J., Soria-Lopez A., Garcia-Perez P., Prieto, M. A. Seaweed polysaccharides: Emerging extraction technologies, chemical modifications and bioactive properties // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2021. https://doi.org/10.1080/10408398. 2021.1969534.
53. Hahn T., Lang S., Ulber R., Kai M. Novel procedures for the extraction of fucoidan from brown algae // Process Biochemistry. 2012. Vol. 47. P. 1691–1698. https://doi.org/10.1016/ j.procbio.2012.06.016.
54. Mwangi W. W., Lim H. P., Low L. E., Tey B. T., Chan E. S. Food-grade Pickering emulsions for encapsulation and delivery of bioactives // Trends in Food Science Technology. 2020. Vol. 100. P. 320–332. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2020.04.020.
55. Chang Y. A. Interfacial deposition of an anionic polysaccharide (fucoidan) on protein-coated lipid droplets: Impact on the stability of fish oil-in-water emulsions // Food Hydrocolloids. 2015. Vol. 51. P. 252–260. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2015.05.014.
56. Simonazzi A., Cid A., Villegas M., Romero A., Palma S., Bermúdez J. Nanotechnology applications in drug controlled release, drug target // Stimuli Sensitive Drug Delivery. 2018. P. 81–116. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-813689-8.00003-3.
57. Richa R. Exploration of polysaccharide based nanoemulsions for stabilization and entrapment of curcumin // International Journal of Biological Macromolecules. 2020. Vol. 156. P. 1287–1296. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2019.11.167.
58. Zhao Y., Zheng Y., Wang J., Ma S., Yu Y., Lu J. Fucoidan extracted from Undaria pinnatifida: Source for nutraceuticals/functional foods // Marine Drugs. 2018. Vol. 16. P. 321. https://doi.org/10.3390/md16090321.
59. Ribeiro A. R., Madeira T., Botelho G., Martins D., Ferreira R. M., Silva A.M.S., Costa R. Brown algae Fucus vesiculosus in pasta: Effects on textural quality, cooking properties, and sensorial traits // Foods. 2022. Vol. 11.P. 1561. https://doi.org/10.3390/ foods11111561.
60. Koh H., Lim S., Lu J., Zhou W. Bioactivity enhancement of fucoidan through complexing with bread matrix and baking // LWT - Food Science and Technology. 2020. Vol. 130. Article 109646. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2020.109646.
61. Lim S., Mustapha W., Maskat M. Seaweed tea: Fucoidan-rich functional food product development from malaysian brown seaweed, Sargassum binderi // Sains Malaysiana. 2017. Vol. 46(9). P. 1573–1579. https://doi.org/10.17576/jsm-2017-4609-28.
62. O’Sullivan A., O’Grady M., O’Callaghan Y., Smyth T., O’Brien N., Kerry J. Seaweed extracts as potential functional ingredients in yogurt // Innovative Food Science and Emerging Technologies. 2016. Vol. 37. P. 293–299. https://doi.org/10.1016/j. ifset.2016.07.031.
63. Poveda-Castillo G., Rodrigo D., Martínez A., Pina-P´erez M. Bioactivity of fucoidan as an antimicrobial agent in a new functional beverage // Beverages. 2018. Vol. 4. P. 64. https://doi.org/ 10.3390/beverages4030064.
64. Патент № 2456873 Российская Федерация, МПК A23L 2/00. Безалкогольный напиток / Кузнецова Т. А., Запорожец Т. С., Беседнова Н. Н. [и др.]. № 2011100769/13 ; заявл. 12.01.2011 ; опубл. 27.07.2012. 9 с.
65. Федянина Л. Н., Смертина Е. С., Лях В. А. Разработка рецептуры хлеба функционального назначения с применением альгината натрия // Хлебопродукты. 2015. № 8. С. 60–62.
66. Патент № 2375878 Российская Федерация, МПК A23C 9/13. Кисломолочный напиток / Каленик Т. К., Федянина Л. Н., Павлова Ж. П. [и др.]. № 2008119157/13 ; заявл. 14.05.2008 ; опубл. 20.12.2009. 6 с.
67. Патент № 2396033 Российская Федерация, МПК A23L 2/02. Безалкогольный напиток / Текутьева Л. А., Каленик Т. К., Фищенко Е. С. [и др.]. № 2009103490/13 ; заявл. 02.02.2009 ; опубл. 10.08.2010. 8 с.
68. Патент № 2569480 Российская Федерация, МПК A23L 1/164. Овощные и фруктово-овощные пастилки, способ их изготовления и потребления (варианты) / Савант В. Д. № 2014107947/13 ; заявл. 02.08.2012 ; опубл. 27.11.2015. 22 с.
69. Moroney N. C. Seaweed polysaccharides (laminarin and fucoidan) as functional ingredients in pork meat: An evaluation of anti-oxidative potential, thermal stability // Marine drugs. 2015. Vol. 13(4). P. 2447–2464. DOI: 10.3390/md13042447.
70. Jannat-Alipour H., Rezaei M., Shabanpour B., Tabarsa M., Rafipour F. Addition of seaweed powder and sulphated polysaccharide on shelf_life extension of functional fish surimi restructured product // Journal of Food Science and Technology. 2019. Vol. 56(8). P. 3777–3789.
71. Ramírez J. A., Uresti R. M., Velázquez G., Vázquez M. Food hydrocolloids as additives to improve the mechanical and functional properties of fish products: A review // Food Hydrocolloids. 2011. Vol. 25(8). P. 1842–1852. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2011.05.009.
72. Montero P., Hurtado J. L., Pérez-Mateos M. Microstructural behavior and gelling characteristics of myosystem protein gels interacting with hydrocolloids // Food Hydrocolloids. 2000. Vol. 14(5). P. 455–461. https://doi.org/10.1016/S0268-005X(00)00025-4.
73. Cortez-Trejo M.C., Gaytan-Martinez M., Reyes-Vega M.L., Mondoza S. Protein-gum-based gels: effect of gum addition on microstructure, rheological properties, and water retention capacity // Trend. Food Sci. Technol. 2021. Vol. 116. P. 303–317. https://doi.org/10.1016/j.tifs. 2021.07.030.
74. Shang Q., Shan X., Cai C., Hao J., Li G., Yu G. Dietary fucoidan modulates the gut microbiota in mice by increasing the abundance of Lactobacillus and Ruminococcaceae // Food Function. 2016. Vol. 7(7). P. 3224–3232. https://doi.org/10.1039/ c6fo00309e.
© Пивненко Т. Н., Позднякова Ю. М., Есипенко Р. В., 2025
Для цитирования: Пивненко Т. Н., Позднякова Ю. М., Есипенко Р. В. Методы получения фукоидана и его использование в пищевых продуктах // Научные труды Дальрыбвтуза. 2025. Т. 72, № 2. С. 8–24.
Статья поступила в редакцию 24.03.2025; одобрена после рецензирования 23.04.2025; принята к публикации 06.05.2025.
Review article
Methods of production, assessment, and applications fucoidan in food products
Tatyana N. Pivnenko
Far Eastern State Technical Fisheries University, Vladivostok, Russia,
Doctor of Biological Sciences, Professor, Professor of the Department of Food Biotechnology
ORCID: 0000-0002-0330-489X
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Yulia M. Pozdnyakova
Far Eastern State Technical Fisheries University, Vladivostok, Russia,
PhD in Technical Sciences
ORCID: 0000-0002-9078-0850
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Roman V. Esipenko
Far Eastern State Technical Fisheries University, Vladivostok, Russia,
PhD in Technical Sciences, Director of Research Institute of Innovative Biotechnology
ORCID: 0000-0002-8263-6939
e-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Abstract. The presented review, based on the analysis of modern scientific data, provides the relevance and prospects of using the products of processing fucus algae (sulfated polysaccharides) in the food industry. A comparison of various methods of fucoidan isolation is carried out, the relationship between its structure and biological activity is shown. The functional-biological and functional-technological properties of fucoidan are provides. Examples of functional food products enriched with fucoidan are given.
Keywords: fucus, fucoidan, extraction, ultrasound, antioxidant activity, rheology
© Pivnenko T. N., Pozdnyakova Yu. M., Esipenko R. V., 2025
For citation: Pivnenko T. N., Pozdnyakova Yu. M., Esipenko R. V. Methods of production, assessment, and applications fucoidan in food products. Scientific Journal of the Far Eastern State Technical Fisheries University. 2025; 72(2): 8–24. (In Russ.).
The article was submitted 24.03.2025; approved after reviewing 23.04.2025; accepted for publication 06.05.2025.